姚骏课题组发现突触囊泡停泊初始态发生的过程及其分子机制
神经元之间的信号传递是大脑最基础的生理活动，当动作电位到达突触时，突触小泡在毫秒级的时间内释放神经递质，从而使动作电位快速跨突触传递，这一过程受到特定蛋白质机器的精密调控。突触小泡与质膜的融合可分为Docking、Priming和Fusion三个过程。Docking作为囊泡融合的起始阶段，是如何发生并由谁介导的，目前尚无定论。2021年3月16日，Cell Reports在线发表了生命中心PI、清华生命学院姚骏课题组标题为“海马神经元中Synaptotagmin-1 与PI(4,5)P2作用启动突触囊泡Docking”（Synaptotagmin-1 interacts with PI(4,5)P2 to initiate synaptic vesicle docking in hippocampal neurons）的研究论文，详细阐述了神经递质释放过程中突触小泡Docking的启动过程及其分子机制。
在文献报道中，Synaptotagmin-1 (Syt1)和三个SNARE蛋白形成的复合物，是介导突触小泡Docking的潜在候选分子机器。SNARE 复合物由三个蛋白组成，是囊泡与质膜融合的最小蛋白机器。Syt1则是动作电位诱发突触小泡释放的钙离子感受器。在经典的囊泡融合模型中，三个SNARE蛋白在远端结合形成一个Z字型的拉链，随着4个平行α螺旋束结构的形成，囊泡自远而近地完成了Docking-Priming的过程，进入“release ready”的状态，这是囊泡Docking的传统模型，即SNARE complex介导了囊泡的Docking。然而，这一模型存在较大争议，原因在于两方面。一方面，Docking的形态学定义（即囊泡须紧贴于质膜）并不准确，Docking究竟在什么位置启动，一直是悬而未决的问题。另一方面，在蛋白机器研究上，多重基因敲除动物模型不但耗时耗力，而且存在很多发育缺陷与代偿作用带来的负面效应。
为解决上述技术障碍，姚骏课题组开发了在体高效沉默多重基因的CRISPRi技术，在神经元中，高效特异地对基因单独或者联合进行条件性敲低，在神经元内构建出类体外重构的环境。另外，课题组结合高压冷冻（High pressure freezing）与电子断层扫描（TEM tomography）技术，得到接近真实状态下神经元突触不同基因敲除的三维电镜数据。从而对突触小泡的Docking过程进行精确的电镜观测和定义。作者首先对SNARE复合物进行了多重敲低，发现在离突触前膜2-12 nm的范围内，突触小泡出现了数倍于对照组的聚集。在SNARE 全敲的基础上引入Syt1敲低后，突触小泡的聚集现象消失，这说明Syt1可能是将囊泡圈定在2-12 nm范围内的关键因素。随后的一系列实验全面证实了Syt1的这一功能。
进一步，作者们开始探索Syt1 启动突触囊泡Docking的分子伴侣。脂质体共沉淀实验（co-sedimentation）表明，Syt1 可以通过其C2B domain 上的K325-K327模块与PIP2结合，突变这一模块（Syt1KA），Syt1则无法与PIP2相互作用。而Syt1与SNARE结合有两个界面，同时突变这些界面位点（Syt1Q/LLQQ），可以有效地减弱Syt1与SNARE的结合。作者发现，在Syt1/SNARE敲低组中引入Syt1KA突变体，并不能让突触小泡被圈定在2-12 nm 范围内，而Syt1Q/LLQQ却可以执行这一功能。所以，Syt1很可能通过与PIP2结合来启动突触小泡Docking。
针对PIP2的功能研究，作者们使用了四种不同的方法来降低或提升突触前膜上PIP2的含量，包括PIP2合成酶PIP5K三个亚型的三重敲降、PIP2水解酶Synaptojanin-1 (Synj)的增强型突变，以及代谢型谷氨酸受体mGluN5的拮抗剂和激动剂处理。这四种方法均有效地改变了突触前膜上PIP2的含量。此外，电镜分析结果表明，降低PIP2含量可抑制Syt1在2-12 nm处启动突触小泡的Docking，而提升PIP2含量则无明显效应。这一系列实验，证明了PIP2是Syt1在膜上的分子伴侣，它们相互作用、共同启动了突触小泡的Docking。
综合来看，本项研究发现Syt1结合PIP2介导了突触小泡的Docking的起始过程，其作用位置位于距质膜约12 nm处, 该过程不依赖于SNARE 复合物，且优先于SNARE 复合物的形成。通过这一研究，作者们发现了Docking起始态发生的位置和分子机制，为理解神经递质的释放过程，尤其是理解大脑在受到高频生理刺激时神经元保持快速高效的响应，做出了重要贡献。
清华大学生命学院姚骏研究员为本文的通讯作者。联合中心博士生陈运、生命学院博士生王颖菡和已出站博士后郑毅为共同第一作者。清华大学生命学院李雪明研究员及其实验室李美静博士，姚骏课题组王秋文博士、博士生汪兵、付崇雷、刘要南为本项研究工作做出了重要贡献。清华大学冷冻电镜平台李英博士和胡晓风、细胞影像平台王文娟博士、NIBS何万中研究员和尼康公司李勋博士为本研究提供了重要帮助。
全文链接：https://www.cell.com/cell-reports/fulltext/S2211-1247(21)00156-X
图一 突触囊泡Docking的动态过程及其分子机制
