RNA结合蛋白(RBP)在RNA的剪接、定位、降解等转录后调控中扮演着核心角色,其功能异常与许多疾病的发生发展密切相关。然而,如何精准、全面地捕捉动态变化的RNA-蛋白相互作用,尤其以单氨基酸分辨率精确绘制RNA-蛋白互作的相互作用界面,一直是领域内面临的巨大挑战。目前,在组学水平上鉴定RNA蛋白结合位点的方法通常依赖于紫外交联并结合液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)。在质谱数据依赖性采集(Data-Dependent Acquisition, DDA)模式下,部分肽段离子仅会按强度由高到低顺序被选择进行碎裂及二级谱扫描,这会导致低丰度、负电荷基团多的核酸交联肽段离子很难被检测到。此外,交联产物的异质性(如连接着单、双、三核苷酸的修饰形式)和假阳性问题,也为RNA交联肽段的精确鉴定带来了巨大困难。
面对上述挑战,作者将课题组此前开发的实时同位素信号靶向分析技术(isoSTAR)(号外 | 王初课题组基于特殊同位素信号开发质谱靶向检测新方法、发现新修饰)与同位素编码的非天然核苷代谢标记相结合,开发了同位素靶向的RNA互作位点鉴定(isoRIC)的新方法。首先,作者设计并合成了在尿嘧啶2-O位进行部分¹⁸O取代(¹⁶O:¹⁸O = 1:2)的光活性核苷4-硫代尿苷(4-SU)。这种同位素4-SU能够被细胞代谢并掺入新合成的RNA中。当用紫外光诱导RNA与蛋白质交联后,所有与RNA交联的肽段都会携带上一个独特的“分子身份证”——一个分子量+2 Da的稳定同位素质量偏移特征。其后,利用同位素编码靶向的isoSTAR技术即可实时监控质谱一级谱(MS1),一旦检测到带有上述特定同位素特征的离子,系统会立即触发二级质谱(MS/MS)扫描,实现对目标交联肽段的“精准打击”。这种策略彻底摆脱了对离子强度的依赖,使得即使含量极低的交联肽段也会被精准靶向鉴定。