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2024年3月15日，北京大学生命科学学院和北大-清华生命科学联合中心陈雪梅课题组在Nature Communications发表了题为Toll/interleukin-1 receptor(TIR) domain-containing proteins have NAD-RNA decapping activity的研究论文，该研究首次发现来自细菌和古细菌的TIR结构域蛋白具有强烈的NAD-RNA脱帽酶活性，能够从NAD+帽子修饰中去除NAM基团，产生一种新的非典型加帽修饰RNA（即环化ADPR-RNA或者其变体）。同时，研究还发现该TIR结构域蛋白介导的NAD-RNA脱帽活性高度依赖于谷氨酸残基催化位点，且在促进TIR结构域蛋白寡聚的条件下表现出增强的活性。TIR结构域蛋白显示出特异于其他已知脱帽酶的性质，即可以特异性地作用于NAD-RNA，而不作用于其他非典型帽子修饰的RNA。

RNA修饰作为一种关键的表观遗传调控机制已经被广泛研究。迄今为止，已经发现了几百种RNA化学修饰，包括N1-甲基腺嘌呤（m1A）、N6-甲基腺嘌呤（m6A）、5-甲基胞嘧啶（m5C）等。近年来，越来越多的研究揭示：真核生物mRNA的5’末端除了存在典型的m7G加帽修饰外，还存在多种新型的5’端非典型加帽修饰，如烟酰胺腺嘌呤二核苷酸（NAD+）、黄素腺嘌呤二核苷酸（FAD）、 脱磷酸辅酶A（dpCoA）等等。其中NAD+帽子修饰RNA（NAD-capped RNA）已经在不同生物体中被广泛鉴定到，包括在原核生物（如大肠杆菌、枯草杆菌、委内瑞拉链霉菌和沙眼衣原体）、真核生物（如酵母、哺乳动物细胞和植物）以及古细菌中。研究发现，不同生物体中的NAD-RNA种类各异。细菌中的编码蛋白mRNA和一些小型调控RNA、古细菌和真核生物中不同类型的RNA都已经被证明存在NAD+加帽修饰，强调了研究NAD-RNA生物合成、代谢和功能的重要性。

目前已经确定有两类NAD-RNA脱帽酶，分别在原核和真核生物中被相继发现。第一类脱帽酶（Class-I）以大肠杆菌的Nudix水解酶NudC为代表，其可以通过裂解NAD+帽子内部的焦磷酸键，释放烟酰胺单核苷酸（NMN），从而产生一个5’单磷的RNA（p-RNA）。真核生物中的NudC同源蛋白（如酵母中的Npy1和哺乳动物细胞中的Nudt12/16）也已经被证明是NAD-RNA的脱帽酶。第二类脱帽酶（Class-II）是以酵母、拟南芥和哺乳动物中的DXO/Rai1家族酶为代表的一类酶，其可去除整个NAD+帽修饰，生成p-RNA。酵母中的5’-3’外切核酸酶Xrn1和Rat1也可以以同样的方式去除NAD+帽子修饰，但主要作用于线粒体NAD-RNA。然而，NudC和DXO/Rai1两类酶也可作用于FAD帽子修饰和dpCoA帽子修饰的RNA，并非特异地作用于NAD-RNA。

研究进一步证明，AbTir在细菌体内具有功能——在大肠杆菌中诱导表达AbTir蛋白可抑制细胞生长，显著降低游离NAD+和NAD-RNA的水平。全转录组范围内的NAD-RNA测序分析表明，大肠杆菌中一小部分涉及“分子运输”和“氧化还原酶活性”的基因产生的NAD-RNA易受到AbTir的靶向。本研究首次证明了TIR结构域蛋白具有NAD-RNA脱帽活性，提示它们在体内可能也参与NAD-RNA的动态调控，为后续研究NAD-RNA的生物学功能提供了良好的基础。有趣的是，TIR结构域蛋白被频繁报道参与生物体的抗病免疫过程，然而其背后的作用机制尚不完全清楚。本研究结果暗示TIR结构域蛋白可能通过影响NAD-RNA的表达水平在生物学抗病免疫中发挥作用，进一步的研究将有助于挖掘生物体抗病免疫新机制。

图1： 三种不同的NAD-RNA脱帽机制总结。

邮箱：

xuemei.chen@pku.edu.cn

研究方向：

本课题组主要研究基因表达转录后调控在植物生长发育，环境响应等生物过程中的作用。目前的主要研究方向之一为microRNA和 siRNA代谢与翻译的关系, microRNA的细胞间运输机制及作为信号分子调控植物响应温度变化的机制。第二个主要研究方向为mRNA的非典型加帽修饰， 比如NAD， FAD， dpCoA 帽子的加入，去除机制及分子功能。已经开发或正在开发利用LC-MS 及组学方法鉴定非典型加帽。第三个刚起步的研究方向为叶绿体的发育， 基因表达， 及RNA 修饰。